1、求助：大鼠/小鼠腦部解剖圖譜
看你需要做什麼解剖實驗了，我一般做的解剖實驗是取小鼠的一些組織或者臟器，一般的話需要：解剖刀、眼科鑷、眼科剪、固定針與固定板。因為是小鼠，所以用的都是小一號的解剖用具。另外，如果你需要做活體的話，還需要注射器用來進行全身麻醉。
希望可以幫助到您，如果還有需要問的請追問。
2、小鼠股靜脈的解剖位置
實驗動物的采血方法——大鼠、小鼠
⒈剪尾采血
需血量很少時常用本法，如作紅、白細胞計數、血紅蛋白測定、製作血塗片等可與此法。動物麻醉後，將尾尖剪去約5mm，從尾部向尾尖部按摩，血即從斷端流出。也可用刀割破尾動脈或尾靜脈，讓血液自行流出。如不麻醉，采血量較小。采血結束後，消毒、止血。
用此法每隻鼠可采血10餘次。小鼠可每次采血約 0.1ml，大鼠約 0.4ml。
⒉眼眶後靜脈叢采血
穿刺採用一根特製的長7～10cm硬的玻璃取血管,其一端內徑為 1～1.5mm，另一端逐漸擴大，細端長約 1cm即可，將取血管浸入 1％肝素溶液，乾燥後使用。采血時，左手拇指及食指抓住鼠兩耳之間的皮膚使鼠固定，並輕輕壓迫頸部兩側，阻礙靜脈迴流，使眼球充分外突，提示眼眶後靜脈叢充血。右手持取血管，將其尖端插入內眼角與眼球之間，輕輕向眼底方向刺入，當感到有阻力時即停止刺入，旋轉取血管以切開靜脈叢，血液即流入取血管中。采血結束後，拔出取血管，放鬆左手，出血即停止。
用本法在短期內可重復采血。小鼠一次可采血0.2～0.3ml，大鼠一次可采血 0.5～1.0ml。
對大鼠損傷小，建議嘗試使用
⒊頸(股)靜脈或頸(股)動脈采血
將鼠麻醉，剪去一側頸部外側被毛，作頸靜脈或頸動脈分離手術,用注射器即可抽出所需血量。大鼠多採用股靜脈或股動脈,方法是：大鼠經麻醉後，剪開腹股溝處皮膚，即可看到股靜脈，把此靜脈剪斷或用注射器采血即可，股動脈較深需剝離出，再采血。
⒋摘眼球采血
此法常用於鼠類大量采血。采血時,用左手固定動物,壓迫眼球，盡量使眼球突出，右手用鑷子或止血鉗迅速摘除眼球，眼眶內很快流出血液。
⒌斷頭采血
用剪子迅速剪掉動物頭部，立即將動物頸朝下，提起動物，血液可流入已預備好的容器中。
假如切開皮膚，取血完畢，需要將切開的皮膚縫合。
3、大鼠剛解剖的胃組織應存放在是什麼環境下?
沒有嚴格要求的話，就放在生理鹽水中。
4、誰有大鼠心臟的解剖圖片？
這類資料只有研究機構或醫科大學的圖書館才可能有，一般大型醫療機構雖然也做動物實驗，但通常的目的是為了醫學新方法的研究和觀察，外科做的相對多些，通常也不需要這么詳細的資料。所以，世面上這樣的資料難找。